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本试剂盒适用于快速提取全血高纯度总RNA，采用改进的异硫氰酸胍/酚一步法裂解细胞和灭活RNA酶，然后总RNA在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜，再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤，去蛋白液和漂洗液将细胞代谢物、蛋白等杂质去除，最后低盐的RNase-free water将纯净RNA从硅基质膜上洗脱。

• 离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口世界著名公司特制吸附膜，柱与柱之间吸附量差异极小，可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。
  
• 结合了异硫氰酸胍/酚一步法试剂稳定性好，纯度高和离心柱方便快捷的优点，不需要异丙醇沉淀和乙醇洗涤过程，RNA可以直接从离心柱上洗脱避免了过度干燥不易溶解问题。
  
• 独特的RL裂解液配方，可以有效的消除基因组污染。
  
• 多次漂洗去蛋白过程，提取RNA纯度更高。
  
• 有效的去除了5S在总RNA中含量，提高了纯度。

• 所有的溶液应该是澄清的，如果环境温度低时溶液可能形成沉淀，此时不应该直接使用，可在37℃水浴加热几分钟，即可恢复澄清。
  
• 不合适的储存于低温（4℃或者-20℃）会造成溶液沉淀，影响使用效果，因此运输和储存均在室温下（15℃～25℃）进行。裂解液RL可以常温运输，收到后4℃避光保存。
  
• 避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。

• 第一次使用前请先在漂洗液RW瓶和70%乙醇瓶中加入指定量乙醇，加入后请及时打钩标记已加入乙醇，以免多次加入!
  
• 所有离心步骤如未加说明，均在室温进行。使用转速可以达到13000rpm的传统台式离心机，如Eppendorf 5415C或者类似离心机。
  
• 裂解液RL和去蛋白液RE中含有刺激性有害化合物，操作时要戴乳胶手套，避免沾染皮肤、眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时，要用大量清水或者生理盐水冲洗。
  
• 考虑到环保问题，本试剂盒不含有实验室常用试剂氯仿，用户使用前需要自备氯仿。
  
• 常规的琼脂糖凝胶电泳和变性胶电泳均可以用来分析RNA的质量。好的RNA产物在电泳后应该可以看到明显的二条优势核糖体RNA带，分别为~5kb(28S)，~2kb(18S)，条带亮度比值约为2∶1。有时候也可以看到~0.1kb和0.3Kb(5S，tRNA)带。但有时候根据不同的物种如某些植物组织可以看到4、5条带也属于正常现象，如果RNA未成熟的前体或者不均一核RNA、小核RNA提取出来也可能看到介于7Kb和15Kb之间的不连续的高分子量条带。
  
• 检测OD260/OD280吸光度比值时，RNA样品应该溶于TE后检测，如果用水稀释后检测，由于一般水离子强度和PH值低，会使OD280升高，从而使比值降低。
  
• 加入裂解液RL匀浆后，加氯仿前，样品可在–60℃～70℃保存一个月以上。
  
• 关于DNA的微量残留：
  一般说来任何总RNA提取试剂在提取过程中无法完全避免DNA的微量残留，在大多数RT-PCR扩增过程中极其微量的DNA残留（一般电泳EB染色紫外灯下观察不可见）影响不是很大，如果要进行严格的mRNA表达量分析如荧光定量PCR，我们建议在进行模板和引物的选择时：
  
  • 选用跨内含子的引物，以穿过mRNA中的连接区，这样DNA就不能作为模板参与扩增反应。
    
  • 选择基因组DNA和cDNA上扩增的产物大小不一样的引物对。
    
  • 将RNA提取物用RNase-free的DNase I处理。
    
  • 在步骤去蛋白液RE漂洗前，直接在吸附柱RA上进行DNase I消化处理。

• 第一次使用前请先在漂洗液RW瓶和70%乙醇瓶中加入指定量乙醇!
  
• 使用前将10×红细胞裂解液RLB用DEPC处理水稀释到1×。

• 在适合大小的RNase-free离心管中加入1体积（0.5～1.0mL）加入各种抗凝剂新鲜血液(颠倒混匀后)和3体积的红细胞裂解液RLB，颠倒混匀，可轻弹管壁，确保混匀。
  
  • 病人血样中白细胞数量可能大幅增加或者减少，应该适当增加或者减少处理量。
• 室温放置10分钟（期间应该颠倒轻弹混匀数次帮助裂解红细胞）。
  
  • 如果RNA降解严重，可在冰上裂解，但是时间可长一些以充分裂解。
• 12000rpm离心20秒，倒弃红色上清，并小心的尽可能多的吸弃上清（注意不要吸到管底的细胞团），留下完整的管底白细胞团。
  
  • 离心后在管底应该见到白色的白细胞团，也可能有一些红细胞残片和白细胞团在一起，但是如果看到的是大部分的红色细胞团，说明红细胞裂解很不充分，应该再加入红细胞裂解液重悬细胞团后重复步骤2、3。
    
  • 上清尽可能的吸弃，残留过多会稀释裂解液，造成裂解结合异常，产量纯度降低。
• 涡旋或者轻弹管壁将白细胞沉淀完全松散重悬，加入1mL的裂解液RL，用移液枪反复吹打来裂解细胞。
  
• 将匀浆样品剧烈震荡混匀，在15～30℃条件下孵育5分钟以使核蛋白体完全分解。
  
• 每1mL裂解液RL加0.2mL氯仿。盖紧样品管盖，剧烈振荡15秒并室温下放置2分钟。
  
• 于4℃12000rpm离心10分钟，样品会分成三层：下层有机相，中间层和上层无色的水相，RNA存在于水相中。水相层的容量大约为所加裂解液RL体积的60%，把水相转移到新管中，进行下一步操作。
  
• 加入等体积70％乙醇（请先检查是否已加入无水乙醇!），颠倒混匀（此时可能会出现沉淀）。得到的溶液和可能沉淀一起转入吸附柱RA中（吸附柱套在收集管内）。
  
• 12000rpm离心45秒，弃掉废液，将吸附柱重新套回收集管。
  
• 加500μL去蛋白液RE，12000rpm离心45秒，弃掉废液。
  
• 加入500μL漂洗液RW（请先检查是否已加入无水乙醇!），12000rpm离心45秒，弃掉废液。
  
• 加入500μL漂洗液RW，12000rpm离心45秒，弃掉废液。
  
• 将吸附柱RA放回空收集管中，13000rpm离心2分钟，尽量除去漂洗液，以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
  
• 取出吸附柱RA，放入一个RNase free离心管中，根据预期RNA产量在吸附膜的中间部位加50～80μL RNase-free water（事先在65～70℃水浴中加热效果更好），室温放置2分钟，12000rpm离心1分钟。如果需要较多RNA，可将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，离心1分钟，或者另外再加30μL RNase-free water，离心1分钟，合并两次洗脱液。
  
  • 洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果需要RNA浓度较高，可以适当减少洗脱体积，但是最小体积最好不少于30μL，体积过小降低RNA洗脱效率，减少RNA产量。